1. Расчет полученных данных представляют в виде таблицы.

Фракции Г Я ТМ ЛМ Р С
Анализируемые пробы Оп. Кн. Оп. Кн. Оп. Кн. Оп. Кн. Оп. Кн. Оп. Кн.

Оптическая плотность,

в каждой параллели и среднее

Аоп – Акн

Количество тирозина по

калибровочной кривой

Активность на 1 мг ткани
Активность фракции в % от гомогената 100%
Количество белка на 1 мг ткани
Белок в % от белка гомогената 100%
Относительная удельная активность фракций

Работа 13. Изучение субклеточного распределения сукцинатдегидрогеназы (маркера митохондрий) в животных тканях

Оборудование и реактивы: центрифуга; печень животного; пипетки; буфер фосфатный 0,067 М (субстратный), рН 7,55; 0,5 М раствор сукцината натрия в субстратном буфере; 0,32 М р-р сахарозы, содержащий 0,01 М трис-буфер рН 7,4 (среда А); 0,32 М р-р сахарозы, содержащий 0,01 μМ MgCl2∙6H2O рН 5,0 (среда Б); 0,02 М раствор феназинметасульфата*; 0,001 М раствор 2,6-дихлорфенолиндофенола (ДХФИФ)**.

* Приготовление раствора феназинметасульфата. 12 мг вещества переносят в стеклянную пробирку, добавляют 2 мл дистиллированной воды, закрывают пробкой и перемешивают. РЕАКТИВ ГОТОВЯТ В ДЕНЬ ОПЫТА.

** Приготовление раствора ДХФИФ. 17 мг вещества растворяют в колбе на 50 мл. РЕАКТИВ ГОТОВЯТ В ДЕНЬ ОПЫТА.

Навеску ткани 2 г переносят в стакан гомогенизатора и добавляют 20 мл среды Б, гомогенизируют. Отбирают 2 мл на определение активности фермента и содержания белка в гомогенате. Центрифугирование и отбор фракций для анализа производят по схеме, приведенной в работе № 11.

 Активность сукцинатдегидрогеназы определяют в исходном гомогенате, ядерной, митохондриальной, лизосомальной, микросомальной и растворимой клеточной фракции по одной из следующих схем:

а) кинетическая схема определения активности.

опыт контроль
400 мкл субстратного буфера 600 мкл субстратного буфера

200 мкл сукцината натрия

на субстратном буфере

200 мкл 0,02 М феназинметасульфата 200 мкл 0,02 М феназинметасульфата

200 мкл 0,001 М ДХФИФ

НЕПОСРЕДСТВЕННО

ПЕРЕД ОПЫТОМ

200 мкл 0,001 М ДХФИФ

НЕПОСРЕДСТВЕННО

ПЕРЕД ОПЫТОМ

Инкубация на водяной бане 3 мин при 37 °С

3 мл фракции,

НАГРЕТОЙ ДО 37 °С

3 мл фракции,

НАГРЕТОЙ ДО 37 °С

Смесь быстро перемешивают и немедленно переливают в кювету (l = 1 см), на секундомере отмечают время начала реакции. Измеряют оптическую плотность системы на фотоэлектроколориметре или спектрофотометре при 600 нм каждые 20 сек в течении 3 мин. Аналогичным образом измеряют снижение оптической плотности в контрольных пробах, не содержащих сукцината. Белок определяют по Лоури. При расчете истинной активности сукцинатдегидрогеназы величины эндогенной активности вычитают из величин, выражающих активность сукцинатдегидрогеназы в пробах, содержащих сукцинат.

Активность выражают в нмолях окисленного сукцината за 1 мин на 1 мг белка, учитывая, что снижение оптической плотности на 1,0 эквивалентно восстановлению 60 нмолей 2,6-ДХФИФ, а количество восстановленного красителя пропорционально количеству окисленного сукцината.

б) стационарная схема определения активности.

опыт контроль
400 мкл субстратного буфера 600 мкл субстратного буфера

200 мкл сукцината натрия

на субстратном буфере

200 мкл 0,02 М феназинметасульфата 200 мкл 0,02 М феназинметасульфата

200 мкл 0,001 М ДХФИФ

НЕПОСРЕДСТВЕННО

ПЕРЕД ОПЫТОМ

200 мкл 0,001 М ДХФИФ

НЕПОСРЕДСТВЕННО

ПЕРЕД ОПЫТОМ

Инкубация на водяной бане 3 мин при 37 °С

3 мл фракции,

НАГРЕТОЙ ДО 37 °С

3 мл фракции,

НАГРЕТОЙ ДО 37 °С

Инкубация на водяной бане 30 мин при 37°С
1 мл 1 н HCl 1 мл 1 н HCl

Затем пробы переливают в центрифужные пробирки и центрифугируют 10 мин про 4000 об/мин. Измеряют оптическую плотность системы на фотоэлектроколориметре или спектрофотометре при 600 нм. Белок определяют по Лоури. При расчете истинной активности сукцинатдегидрогеназы величины эндогенной активности вычитают из величин, выражающих активность сукцинатдегидрогеназы в пробах, содержащих сукцинат.

Активность выражают в нмолях окисленного сукцината за 1 мин на 1 мг белка, учитывая, что снижение оптической плотности на 1,0 эквивалентно восстановлению 60 нмолей 2,6-ДХФИФ, а количество восстановленного красителя пропорционально количеству окисленного сукцината.

Содержание отчета


Информация о работе «Практикум по энзимологии»
Раздел: Медицина, здоровье
Количество знаков с пробелами: 52671
Количество таблиц: 30
Количество изображений: 1

Похожие работы

Скачать
13336
4
0

... ферменты. – М.: Мир, 1983. – 293 с. 4. Бернхард С. Структура и функция ферментов. – М.: Мир, 1971. – 334 с.   Требования к уровню освоения программы   В результате изучения данной дисциплины студент должен знать классификацию и номенклатуру ферментов, их строение и механизмы функционирования, а также современные методы работы с ферментами. уметь применять приемы номенклатуры ферментов, ...

Скачать
14609
1
0

... составлена в соответствии с Государственным образовательным стандартом Высшего профессионального образования для студентов, обучающихся по специальности 020208 – «Биохимия». 4. Место дисциплины в профессиональной подготовке студентов Курс «Энзимология» предшествует изучению студентов курсов кинетики и термодинамики ферментативных реакций. Он имеет основополагающее значение, поскольку главным ...

Скачать
14172
6
0

... является курсом, для изучения которого необходимо наличие знаний об основных принципах организации биологических молекул, строении и механизмах действия ферментов. Дисциплина биохимия мембран относится к дисциплинам специализации федерального компонента.   5. Распределение времени, отведенного на изучение дисциплины по учебному плану Форма учебной работы Форма обучения Очная По ...

Скачать
41413
1
0

... живых организмов, биологических процессов и систем в производстве, включая превращение различных видов сырья в продукты. По определению академика Ю.А. Овчинникова, биотехнология - комплексная, многопрофильная область научно - технического прогресса, включающая разнообразный микро - биологический синтез, генетическую и клеточную инженерную энзимологию, использование знаний, условий и ...

0 комментариев


Наверх